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Caso clínico: Episodio de elevada mortalidad en destete

La sintomatología nerviosa se ​​caracteriza por algunos casos de meningitis y opistótonos, mareos y postración grave en un gran número de animales. La necropsia muestra en todos los casos una congestión pulmonar grave y una enteritis de gravedad variable con afectación de más o menos importancia de los ganglios linfáticos mesentéricos.

Descripción de la explotación

Se trata de un sitio 2 donde entran lechones de 21 días de vida procedentes de un sitio 1 situado a unos 500 km de distancia. El sitio 2 se llena con 2 lotes de 1000 lechones destetados, con siete días de intervalo. El presente caso clínico se produjo el 21 y el 28 de junio de 2012. El estado sanitario del sitio 1 es el siguiente: PRRS +, Mycoplasma Hyopneumoniae +, Circovirus +, App +, Hps +, Steptococcus Suis Tipo 2 +, Aujeszky -, Sarna -. En el sitio 2 se realiza un manejo todo dentro - todo fuera.

La explotación en cuestión pertenece a un sistema de producción integrada que dispone de una gran cantidad de datos anamnésicos relativos a los cerdos y a su procedencia. Los datos indican que el agente patógeno que se manifiesta comúnmente en Strepococcus Suis Tipo 2 así como la medicación estratégica que se adopta regularmente teniendo en cuenta sobretodo este hecho y el riesgo siempre presente de enteritis debida a E. Coli. Los lechones llegan regularmente vacunados contra el PCV2 y Mycoplasma hyopneumoniae. La explotación es positiva para PRRS.

El esquema alimentario y la medicación en uso es la siguiente:

1ª semana (1,5 Kg/cabeza): Prestarter + 3000 ppm ZnO y Amoxicilina en agua de bebida
2ª-3ª semana (6 Kg/cabeza): Link feed + 600 ppm Amoxicilina y 180 ppm Colistina
4ª-6ª semana: Estarter + 3000 ppm ZnO
7ª-9ª semana: Estarter sin medicación

Calendario

Aparición del caso y primeras actuaciones (días 0-7)

El 3 y 4 de julio aparecieron algunos lechones con sintomatología nerviosa: conociendo el origen de los animales se adoptó una terapia inyectable con Amoxicilina sobre los lechones afectados.

Durante la visita del 6 de julio se realizó la necropsia de dos lechones: se observó una enteritis leve con afectación linfonodal. Algunos animales fueron enviados al laboratorio para un diagnóstico más preciso y, mientras tanto, se utilizó gentamicina en el agua potable.

Durante el domingo 8 y lunes 9 el número de animales con sintomatología nerviosa aumentó un 20%: se pasó a terapia en agua con Amoxicilina y se inyectó con Amoxicilina a todos los animales (2000 animales aproximadamente). En ese momento el número de lechones muertos fue de 26 de los 2025 entrados (1,28%). Como puede observarse en el calendario, el día 5 eran 14, mientras que entre el domingo 8 y lunes 9 murieron otros 12 animales. La sintomatología nerviosa se ​​caracteriza por algunos casos de meningitis y opistótonos, mareos y postración grave en un gran número de animales.

La necropsia mostró en todos los casos una grave congestión pulmonar y enteritis de gravedad variable con una afectación de más o menos importancia de los ganglios linfáticos mesentéricos.

congestión pulmonar grave y una enteritis de gravedad variable con afectación de más o menos importancia de los ganglios linfáticos mesentéricos.

Diagnóstico y medidas tomadas (día 8)

El día 10 de julio por la mañana la sintomatología no mostró señales de mejoría e incluso había nuevos cerdos con los mismos síntomas. Por último, vía telefónica el laboratorio de diagnóstico informó que se aisló E. coli hemolítica caracterizada por un antibiograma que ofrecía pocas soluciones.

Muestra 1 INTESTINO Identificación
Parámetro/método Resultado Unidad de medida Incertidumbre Límite Inicio Fin
Patógenos gastro-intestinales Escherichia coli hemolítico       06/07 11/07
Microbiológico: MI MD 12 rev. 0 del 9/12/04            
             
Antibiograma Ver anexo       09/07 11/07
Kirby-Bauer: MI MD 08 rev. 0 del
26/11/04
           
             
Muestra 2 INTESTINO Identificación
Parámetro/método Resultado Unidad de medida Incertidumbre Límite Inicio Fin
Patógenos gastro-intestinales Escherichia coli hemolítico       06/07 11/07
Microbiológico: MI MD 12 rev. 0 del
9/12/04
           
             
Muestra 3 CABEZA Identificación
Parámetro/método Resultado Unidad de medida Incertidumbre Límite Inicio Fin
Streptococcus suis Negativo       06/07 11/07
Microbiológico: MI MD 06 rev. 0 del
15/11/04
           
             
Muestra 4 CABEZA Identificación
Parámetro/método Resultado Unidad de medida Incertidumbre Límite Inicio Fin
Streptococcus suis Negativo       06/07 11/07
Microbiológico: MI MD 06 rev. 0 del
15/11/04
           

 

ANTIBIOGRAMA ANEXO

Material: intestinio porcino

Muestra nº 1 Ident. Microorganismo Antibiótico Resultado
    Escherichia coli

Enrofloxacina
Marbofloxacina 2
Amoxicilina clavulánico
Penicilina
Trimetroprim + sulfametoxazol
Aminosidina
Amoxicilina
Apramicina
Colistina
Flumequina
Gentamicina
Tulatromicina

I
I
R
R
R
R
R
R
R
R
R
I

Leyenda: R=Resistente; I=Intermedio; S=Sensible

Tras el informe del laboratorio se procedió a inyectar a todos los lechones con Enrofloxacina con una nueva formulación que garantiza 48 horas de cobertura, asociado a una solución rehidratante subcutánea para los cerdos más graves. Ese mismo día se envían varios animales más a otro laboratorio de diagnóstico más especializado que el primero.

Al mismo tiempo, dada la limitada información del antibiograma, se decidió administrar en el agua un producto a base de ácido oxolínico que, por la experiencia del veterinario, había dado buenos resultados en casos similares. Al mismo tiempo se adoptó también un pienso con alto contenido de fibra y medicado con 3000 ppm de ZnO.

 

Evolución del caso, nuevas medidas (días 9 - 14)

Durante los dos días siguientes continuó la mortalidad en los cerdos ya afectados y apareció algún caso nuevo. Las pérdidas totales superaban ya el 10% y la mayoría de animales ingerían muy poca comida y el consumo de agua era escaso. Se decidió suspender la medicación en el agua y se pasó a suministrar a través del agua un producto rehidratante/desintoxicante a base de sales minerales, azúcares, aminoácidos y vitaminas con el fin de "alimentar" a los animales y, especialmente, para restaurar el círculo virtuoso> consumo de agua> ingesta de alimentos> consumo de agua.

El consumo de agua retornó a la normalidad, el consumo de alimento empezó a aumentar y el lunes 16 de julio un grupo de animales comenzaron a mostrar signos de retorno a la normalidad: la mortalidad, sin embargo, llegó a más de un 15%. Los cerdos afectados y severamente prostrados casi siempre murieron a las 48-72 horas. Se tomaron muestras de animales y vísceras que fueron enviadas al laboratorio de diagnóstico.

Confirmación de los resultados laboratoriales

El resultado del laboratorio en relación con el envío de muestras del 10 de julio muestra, como en el primer caso, enteritis, linfoadenitis y congestión pulmonar. Streptococcus suis se aisló del cerebro de un cerdo y del endocardio de otro.

Material conferido: ANIMAL VIVO/CANAL Especie: PORCINO
Motivo del envío: Diagnóstico
Numero de muestras: 5
Condiciones del material suministrado: Idóneo

RESULTADOS DE LAS PRUEBAS

1 Prueba: Examen anatomopatólogico animales de tamaño medio-pequeño
Técnica: Anatomopatológico
Método de Prueba: NK 2629
Muestras: 1-5
Resultados: Congestión pulmonar. Hiperplasia y congestión de los nódulos linfoides mesentéricos, para la muestra: 1
Congestión pulmonar. Hiperplasia folicular del colon. Hiperplasia de los nódulos linfáticos mesentéricos. Congestión de los vasos meningeos y cerebrales, para la muestra: 2
Edema pulmonar. Hiperplasia de los nódulos linfáticos mesentéricos, para la muestra: 3
Edema pulmonar. Congestión de los vasos cerebrales y meníngeos para la muestra:4
Perihepatitis fibrinosa. Periepicarditis fibrinosa, endocarditis úlcero-poliposa para la muestra: 5

2 Prueba: Examen bacteriológico
Técnica: Microbiológica
Método de Prueba: MP 01/181 rev. 0
Sobre las muestras: 1-5
Resultado: Negativo para agentes patógenos en las muestras: 1, 2, 3
Streptococcus suis en el cerebro en la muestra: 4
Streptococcus suis en endocardio en la muestra: 5

3 Prueba: PRRS: agente etiológico
Técnica: PCR
Método de Prueba: NK 1651
Sobre las muestras: del n.1 al n.5 (en pool)
Detalle: Pool Nr.1
Resultado: No se demuestra presencia

4 Prueba: Enfermedad de Aujeszky: agente etiológico
Técnica: PCR
Método de Prueba: NK 2086
Sobre la muestra: 2
Resultado: No se demuestra presencia

5 Prueba: Encefalomiocarditis cardiovirus: agente etiológico
Técnica: PCR
Método de Prueba: MP 09/051 rev. 0
Sobre las muestras: del n.1 al n.5 (en pool)
Detalle: Pool Nr.1
Resultado: No se demuestra presencia

6 Prueba: Antibiograma
Técnica: Kirby-Bauer
Método de Prueba: NK 122
Agente Etiológico: Streptococcus suis
Muestra: 5
Sensible a: Amoxicilina, Amoxicilina + Ac.Clavulánico, Ampicilina, Cefquinoma, Ceftiofur, Tiamulina, Tilosina
Resistente a: Cefalexina, Lincomicina, Penicilina, Tetraciclina, Trimetoprim + Sulfonamidas

7 Prueba: Examen bacteriológico
Técnica: Microbiológica
Método de Prueba: MP 01/103 rev. 1
Muestra: 2
Ausencia

Las siglas MP o NK identificas un `Método de prueba interno`.

*** FIN DEL INFORME ***

En los días sucesivos a los resultados relacionados a las muestras enviadas al laboratorio el día 16 emerge la presencia de varias cepas de E. Coli, hemolítica o no; la genotipificación de estas cepas muestra la presencia de los genes Stb y LT (aunque la diarrea nunca ha sido un síntoma dominante), y especialmente de los genes VT2.

 

Material conferido: ANIMAL VIVO/CANAL/ individuos de cerca de 40 días de vida
Especie: PORCINO - DESTETE
Motivo del envío: Diagnóstico
Número de muestras: 5
Fecha del muestreo: 16/07/2012
Condiciones del material recibido: Idóneo

RESULTADOS DE LAS PRUEBAS

1 Prueba: Examen anatomopatólogico animales de talla grande
Técnica: Anatomopatológico
Método de Prueba: NK 2627
Sobre las muestras: 1-5
Resultados: enteritis,linfoadenitis y congestión pulmonar, para las muestras: 1, 2, 3, 4, 5

2 Prueba: Examen bacteriológico
Técnica: Microbiológica
Método de Prueba: MP 01/181 rev. 0
Sobre la muestra: 1
Resultado: E.coli no hemolítica (K88 NEGATIVOS) en las muestras 1,2,3,4.
Presencia de E.coli hemolítico en la muestra 5 (K88 NEGATIVO).
No se demuestra presencia de Salmonella en ninguna de las muestras.
Presencia de Streptococcos en el cerebro de la muestra n. 4, el resto de muestras son negativas, para la muestra: 1

3 Prueba: Genotipificación E.coli enterotoxigénica (ETEC)
Técnica: PCR Multiplex
Método de Prueba: NK 2405
Sobre la muestra: 5
Resultado: No se demuestra la presencia para la muestra analizada

4 Prueba: Genotipificación E.coli enterotoxigénica (ETEC)
Técnica: PCR Multiplex
Método de Prueba: NK 2405
Sobre las muestras: del n.1 al n.4 (en pool)
Detalle: Pool Nr.1
Resultado: Demostrada la presencia de los genes Stb e LT

5 Prueba: Gen/genes codificantes de verotoxinas (VTEC) Escherichia coli
Técnica: PCR Real Time
Método de Prueba: MP 09/109 rev. 1
Sobre la muestra: 1
Resultado: Presencia del gen VT2 para la muestra analizada

6 Prueba: Antibiograma
Técnica: Kirby-Bauer
Método de Prueba: MP 01/068 rev. 0
Agente Etiológico: Escherichia coli
Muestra n°: 1
Sensibile a: Aminosidina, Cefalexina, Ceftiofur, Colistina, Neomicina
Resistente a: Amoxicilina, Amoxicilina + Ác.Clavulánico, Apramicina, Danofloxacina, Enrofloxacina, Florfenicol, Flumequina, Gentamicina, Marbofloxacina, Penicilina, Espectinomicina, Tilmicosina, Trimetoprim + Sulfonamidas

7 Prueba: Antibiograma
Técnica: Kirby-Bauer
Método de Prueba: MP 01/068 rev. 0
Agente Etiológico: Escherichia coli hemolítico
Muestra n°: 5
Sensible a: Apramicina, Ceftiofur, Flumequina, Gentamicina
Resistente a: Aminosidina, Amoxicilina, Amoxicilina + Ác.Clavulánico, Cefalexina, Colistina, Danofloxacina, Enrofloxacina, Florfenicol, Marbofloxacina, Neomicina, Penicilina, Espectinomicina, Tetraciclina, Tilmicosina, Trimetoprim + Sulfonamidas

8 Prueba:

Antibiograma
Técnica: Kirby-Bauer
Método de Prueba: MP 01/068 rev. 0
Agente Etiológico: Gen. streptococcus
Muestra n°: 4
Sensibile a: Amoxicilina, Amoxicillina + Ác.Clavulánico, Ceftiofur
Intermedio a: Trimetoprim + Sulfonamidas
Resistente a: Ampicilina, Cefalexina, Danofloxacin, Enrofloxacin, Eritromicina, Lincomicina, Marbofloxacina, Penicilina, Espiramicina, Sulfadiazina Tetraciclina, Tilosina

ESPECIFICACIONES DE LA PRUEBA

Prueba: Genotipificación E.coli enterotoxigénicai (ETEC) Técnica: PCR Multiplex Método de Prueba: No codificado
El método implica la detección de genes que codifican para K99, K88, 987P, F41, F18, Sta, Stb y LT.

Prueba: Gen/genes codificadores de verotoxina (VTEC) Escherichia coli Técnica: PCR Real Time Método de Prueba: MP 09/109 rev. 1
El método detecta la presencia de los genes VT1, VT2 y eae.

CONSIDERAR NEGATIVO para VTEC sólo si el resultado es uno de los casos siguientes:
- ausencia
- presencia sólo del gen VT1
- presencia sólo del gen eae

La sigla MP o NK identifica un `Método de prueba interno`.

*** FIN DEL INFORME ***

Resolución y conclusiones

La tasa de mortalidad comienza a disminuir de manera significativa, pero el número de lechones que ya no pueden recuperar una vida productiva es muy alto: el día 19 se llevó a cabo la eutanasia de estos animales. El 27 de julio el número de cerdos muertos fue de 442 de los 2025 que entraron (21,83%).

Mortalidad

Desde el momento que los lechones son parte de un sistema de producción integrada la preocupación principal fue la relativa a los siguientes grupos de lechones que se destetaron de ese mismo sitio 1: por el momento no se observó nada anormal.

Seguimos, pues, con la eterna pregunta que no encuentra una respuesta convincente: ¿de dónde vino una E. Coli como patógeno? y el próximo reto será el de evaluar lo que va a pasar con los mismos cerdos de la misma fuente en el mismo sitio 2.

Sin duda hemos visto lo que podía causar una grave enterotoxemia por E. Coli con animales fuertemente abatidos que no pueden levantarse ni para comer ni para beber. Bajo esta situación, el antibiótico administrado en el agua o en el alimento no llega a su destino. La rehidratación ayudó a los animales a ponerse en pie, probablemente debido a que el agua azucarada los animó a beber. Si se empieza a beber y comer luego el antibiótico hace su efecto.

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